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Por favor, use este identificador para citar o enlazar este ítem: https://hdl.handle.net/20.500.12008/41378 Cómo citar
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Campo DC Valor Lengua/Idioma
dc.contributor.advisorPanizza Scasso, Paola-
dc.contributor.advisorDans Puiggròs, Pablo D.-
dc.contributor.authorTijman Nuñez, Ariel-
dc.date.accessioned2023-11-21T16:01:02Z-
dc.date.available2023-11-21T16:01:02Z-
dc.date.issued2023-
dc.identifier.citationTijman Nuñez, A. Ingeniería de proteínas para la síntesis de aminas quirales: optimización de una ω-transaminasa de Capronia semiimmersa [en línea] Tesis de maestría. Montevideo : Udelar. FQ, 2023es
dc.identifier.urihttps://hdl.handle.net/20.500.12008/41378-
dc.description.abstractLas enzimas son catalizadores eficientes y sustentables, capaces de llevar a cabo reacciones tanto quimio- como estereoespecíficas difíciles de lograr mediante métodos químicos tradicionales. La biocatálisis se alinea con los principios de la química verde, lo que redunda en ventajas tanto desde el punto de vista ambiental como económico. Un área en la que presenta un gran potencial es la síntesis de aminas quirales. Estas se encuentran presentes en un alto porcentaje de fármacos y compuestos bioactivos, por lo que su producción es un objetivo fundamental para la industria. Su síntesis química tradicional en forma enantioméricamente pura es difícil de lograr, requiriendo catalizadores que utilizan metales pesados y por lo tanto generan alto impacto ambiental. Enzimas como imino-reductasas, aminasas reductivas o transaminasas podrían proveer un proceso mejor para este fin, pero se hace necesaria la búsqueda de enzimas de este tipo que sean capaces de cumplir con los exigentes requisitos de los procesos industriales. En trabajos previos del grupo fue identificada y caracterizada una ω-transaminasa de Capronia semiimmersa (TACap). Esta enzima demostró ser capaz de utilizar tanto D-alanina como isopropilamina como donores de amino, siendo esta última más atractiva desde un punto de vista económico. La producción y purificación de la enzima fueron optimizadas y la especificidad de sustrato ensayada. En particular se destaca la capacidad de esta enzima de tomar como sustrato aceptor de amino a la fenilacetona, dando como producto a la L anfetamina. Este producto es intermediario en la síntesis del [11C]L-deuterodeprenil, un radiofármaco de utilidad en el diagnóstico de enfermedades neurodegenerativas de uso actualmente en el Centro Uruguayo de Imagenología Molecular.Si bien esto resultó promisorio, el grupo se encontró con bajas conversiones debido a una baja estabilidad de la enzima en las condiciones de reacción. Este trabajo de maestría se planteó aprovechar el avance de los métodos bioinformáticos y de la química computacional para desarrollar, a partir de esta enzima ya caracterizada, variantes que permitiesen cumplir con los requisitos de actividad y estabilidad requeridos para el escalado de la reacción mencionada anteriormente. Partiendo de esta premisa fue recreada una estructura tridimensional de TACap, cuya dinámica molecular fue simulada y analizada para comprender las interacciones moleculares presentes y proponer modificaciones que pudiesen aumentar su estabilidad. Mediante esta estrategia se propuso la eliminación de dos regiones desordenadas. En paralelo fue seguida una estrategia basada en el análisis de la secuencia: fue construida una secuencia consenso utilizando 919 secuencias relacionadas a la TACap. Se ha reportado que los aminoácidos conservados pueden contribuir favorablemente a la estabilidad, por lo que se seleccionó un conjunto de 41 mutaciones puntuales (aminoácido nativo intercambiado por aminoácido consenso) con potencial para estabilizar la proteína. xi Las modificaciones propuestas fueron incorporadas sobre el gen codificante de la enzima nativa mediante PCR, y las variantes fueron expresadas para analizar su estabilidad y actividad. La estabilidad fue evaluada mediante la medida de la temperatura de melting (desnaturalización) aparente (Tm) de las proteínas, y aquellas con un Tm superior a aquel de la enzima nativa fueron evaluadas en cuanto a su actividad. La prueba de actividad fue llevada a cabo mediante un ensayo espectrofotométrico con un sustrato modelo, y aquellas enzimas con una actividad comparable o superior a la de la enzima nativa fueron consideradas para el siguiente paso.Las tres mejores variantes fueron combinadas para dar lugar a cuatro enzimas que fueron nuevamente evaluadas en cuanto a su estabilidad y actividad. Una de estas variantes, conteniendo las mutaciones L106V y Δ211-217, presentó un aumento en la Tm de 6°C, junto con una actividad relativa de 213% comparada con la enzima original, lo que la vuelve una opción muy prometedora para su aplicación a la síntesis del radiofármaco de interés.es
dc.description.tableofcontentsAgradecimientos. Resumen. Abstract.Tabla de contenidos. Lista de tablas. Lista de figuras. Lista de abreviaturas. Introducción. Biocatálisis. Determinación de estructuras tridimensionales de proteínas. Estabilidad de enzimas. Diseño racional in silico. Simulaciones de dinámica molecular. Secuencia consenso. Cálculo de energía libre de plegamiento tras mutación. Aminas quirales y amino transaminasas. ω-transaminasa de Capronia semiimmersa. Vinculación al CUDIM. Objetivos. Objetivo general. Objetivos específicos. Capítulo I: Modelado, simulaciones y análisis bioinformático. 1.1. Introducción. 1.2. Materiales y métodos. 1.2.1. Modelado por homología. 1.2.2. Modelado con AlphaFold2. 1.2.3. Parametrización de aldimina interna Lys-PLP (KLP). 1.2.4. Preparación de estructuras para MD. 2.5. Preparación del sistema y corrida de MD de producción. 1.2.6. Análisis de simulaciones. 1.2.7. Secuencia consenso. 1.2.8. Cambio de energía libre de plegamiento tras mutación. 1.3. Resultados y discusión. 1.3.1. Obtención de estructura de TACap. 1.3.2. Generación de librería para la aldimina interna Lys-PLP (KLP). 1.3.3. Simulaciones de dinámica molecular. 1.3.4. Reportes previos. 1.3.5. Secuencia consenso. 1.3.6. Cambio de energía libre de plegamiento tras mutación. 1.4. Conclusiones. Capítulo II: Clonado, expresión y análisis de variantes enzimáticas. 2.1. Introducción. 2.2. Materiales y métodos. 2.2.1. Cepas bacterianas y plásmidos. 2.2.2. Medios de cultivo y enzimas. 2.2.3. Soluciones y materiales. 2.2.4. Extracción de ADN (miniprep). 2.2.5. Electroforesis de ADN en gel de agarosa. 2.2.6. Purificación de ADN por gel. 2.2.7. Restriction Free Cloning (RFC). 2.2.8. Concentración de ADN. 2.2.9. Precipitación de ADN con ARNt. 2.2.10. Golden Gate Cloning. 2.2.11. Mutagénesis sitio-dirigida. 2.2.12. Deleción de regiones. 2.2.13. Primers utilizados. 2.2.14. Condiciones de PCR. 2.2.15. Preparación de células electrocompetentes. 2.2.16. Transformación de células electrocompetentes. 2.2.17. Preparación y transformación de células quimiocompetentes.. 2.2.18. Guardado de cepas en freezer. 2.2.19. Envío de cepas en papel de filtro. 2.2.20. Expresión de TACap. 2.2.21. Electroforesis de proteínas PAGE-SDS. 2.2.22. Medida de Tm. 2.2.23. Medida de actividad enzimática. 2.2.24. Cinética de inactivación térmica. 2.3. Resultados y discusión. 2.3.1. Clonado. 2.3.2. Construcción de variantes. 2.3.3. Expresión de proteínas. 2.3.4. Determinación de Tm. 2.3.5. Análisis de algunas mutaciones estabilizantes. 2.3.6. Ensayos de actividad y estabilidad. 2.4. Conclusiones. Conclusiones generales y perspectivas. Anexos. Secuencia de ADN de TACap. Secuencia aminoacídica de TACap. Modificación de campo de fuerza. Librería de parámetros para KLP. Códigos empleados. Archivos adjuntos. Bibliografíaes
dc.format.extent142 p.es
dc.format.mimetypeapplication/pdfes
dc.language.isoeses
dc.publisherUdelar. FQes
dc.rightsLas obras depositadas en el Repositorio se rigen por la Ordenanza de los Derechos de la Propiedad Intelectual de la Universidad de la República.(Res. Nº 91 de C.D.C. de 8/III/1994 – D.O. 7/IV/1994) y por la Ordenanza del Repositorio Abierto de la Universidad de la República (Res. Nº 16 de C.D.C. de 07/10/2014)es
dc.subjectBIOCATALISISes
dc.subjectBIOINFORMATICAes
dc.subjectTRANSAMINASAes
dc.titleIngeniería de proteínas para la síntesis de aminas quirales: optimización de una ω-transaminasa de Capronia semiimmersaes
dc.typeTesis de maestríaes
dc.contributor.filiacionTijman Nuñez Ariel-
thesis.degree.grantorUniversidad de la República (Uruguay). Facultad de Químicaes
thesis.degree.nameMagíster en Químicaes
dc.rights.licenceLicencia Creative Commons Atribución - No Comercial - Sin Derivadas (CC - By-NC-ND 4.0)es
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